禽流感病毒亚型有H5N1、H7N1、H7N2、H7N3、H7N7、H7N9和H9N2亚型。其间,高致病性H5N1亚型和2013年3月在人体上,初次发现的新禽流感H7N9亚型,尤为引人重视。不只造成了人类的伤亡,一起重创了家禽养殖业。
禽流感病毒H7亚型检测试剂盒
【包装规格】 25头份/盒 & 50头份/盒
【预期用途】
本试剂盒利用实时荧光PCR原理,定性检测禽流感病毒H7亚型,对禽流感病毒引起的流感及其并发症的诊断及疗效评估有重要指导意义。
【检验原理】
本试剂盒针对禽流感病毒H7亚型基因组高度保守区域设计特异性引物和探针,在反应体系中含禽流感病毒H7亚型基因组模板的情况下,PCR反应得以进行并释放荧光信号。利用荧光定量PCR仪对PCR过程中相应通道信号进行实时监测和输出,实现检测结果的定性分析。
注:阴性对照为禽类基因组DNA,阳性对照为失去活性的禽流感病毒H7亚型cDNA。
【储存条件及有效期】避光-20℃以下保存,避免反复冻融,有效期12个月。
【适用仪器】ABI 系列、Bio-Rad系列、Agilent Stratagene MX系列 、Roche LightCycler R480、Cepheid SmartCycler、Rotor-Gene系列、杭州博日系列等多通道实时荧光定量PCR仪。
【样本要求】
1.取咽喉拭子、泄殖腔拭子或血液样本,禽肉取肌肉或内脏样本,样本处理方法参照相关文献资料。
2.样本采集后应立即检测,若不能立即检测,应置于-80℃冷冻保存,避免反复冻融,用干冰或液氮运输。
【检验方法】
1. 试剂准备(试剂准备区)
(1)从冰箱中取出试剂盒, 从试剂盒中取出实验所需试剂,充分融化混匀并瞬时离心以去除管壁附着液体。
(2)核算当次实验所需要的反应数(n),并根据如下表所示反应体系计算当次实验所需要的各种试剂量。
n =阴性对照数(1T)+阳性对照数(1T)+误差预留量(1T)+样本数
份) | Taq酶 | 3.0 μL |
(3)在无菌离心管中加入上述试剂,充分混匀后瞬时离心。按照20 μL/管分装量将试剂分装至PCR反应管。
2.样本准备(样本处理区)
用QIAGEN、Roche公司RNA提取试剂盒提取RNA,具体操作按照其试剂盒说明书操作。
3.加样
在上述制备好的PCR反应样本管中分别加入处理好的待测标本RNA各5 μl、终体积25μl/管,盖好PCR反应盖混匀后瞬时低速离心,转移到PCR仪器上。阴性对照和阳性对照管则各加5 μL试剂盒自带的阴性对照或阳性对照品,终体积为25 μl/管,盖好PCR反应盖混匀后瞬时低速离心,转移到PCR仪器上。
4.PCR(PCR扩增区)
(1)取样本处理区准备好的PCR反应管,放置在实时荧光定量PCR仪样品槽相应位置,并记录放置顺序。
反应体积 | 25 μL | 通道选择 | FAM通道采集禽流感病毒H7亚型荧光信号 |
PCR 反应 条件 | 步骤 | 条件 | 循环数 |
反转录 | 42℃:10分钟(min) | 1 | |
预变性 | 95℃:3分钟(min) | 1 | |
预扩增 | 95℃:5秒(s) | 5 | |
55℃:40秒(s) | |||
PCR扩增 | 95℃:5秒(s) | 40 | |
55℃:40秒(s) (此阶段结束时采集荧光信号) |
(2)按下表设置仪器核酸扩增相关参数进行PCR扩增。
注:ABI系列荧光PCR仪在设置时不选ROX校正,设置淬灭基团选择None。
【参考值(参考范围)】
1.试剂盒有效性判定:
(1)阳性对照:有典型S型扩增曲线或Ct值≤35。
(2)阴性对照:Ct值>38或无Ct值,线形为直线或轻微斜线,无指数增长期。
2.标本结果判定:
(1)阳性:标本检测结果Ct值≤35或有明显指数增长期。
(2)可疑:标本检测结果Ct值在35~38范围内。此时应对标本进行重复检测,如重复实验结果Ct值仍在35~38范围内,有明显指数增长期,则判定为阳性,否则为阴性。
(3)阴性:标本检测结果Ct值>38或无Ct值。
【检验结果的解释】
通道及检测结果 | 标本检测结果解释 |
FAM | |
+ | 标本中检出禽流感病毒H7亚型RNA |
- | 标本中未检出禽流感病毒H7亚型RNA |
【检验方法的局限性】
1. 当检测样本中被检核酸浓度低于本试剂盒的*检出*可能会发生假阴性的结果。
2. 被检样本在采集、运输、储存以及处理过程中操作方式不当容易造成RNA降解而产生假阴性结果。
3. 样本在采集、运输、储存以及处理过程中发生交叉污染,则容易得到假阳性结果。
【产品性能指标】 产品的*检出限为102 Copies/mL,产品CV值≤5%。